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​Eaivelly蛋白快速染色液在Western Blot预处理中的应用价值

更新时间:2025-09-18      点击次数:31

Eaivelly蛋白快速染色液在Western Blot预处理中的应用价值

摘要: Western Blot(WB)是检测特定蛋白质的金标准技术,其成功高度依赖于上样量是否准确及转膜效率是否充分。因此,对SDS-PAGE凝胶进行全蛋白染色以标准化上样量和验证转膜,已成为优化WB流程的关键质控步骤。本文聚焦于Eaivelly蛋白快速染色液在WB预处理应用中价值。我们将详细分析其相较于丽春红S染色的高灵敏度,以及与硝酸纤维素膜(NC膜)/PVDF膜兼容性,论证其如何作为一种高效的WB质控工具,避免珍贵样本的浪费,并显著提升Western Blot实验的可靠性与重复性。

关键词: Eaivelly蛋白快速染色液;Western Blot质控;上样量标准化;转膜效率验证;丽春红S;总蛋白归一化


1. 引言:Western Blot中的“黑箱"与质控需求

Western Blot技术流程长、变量多,其结果的不确定性常让研究者困扰。失败可能源于多个环节:上样量不准确、电泳分离效果差、转膜、抗体特异性问题等。其中,前两个环节——上样和转膜——是整个实验的“黑箱",传统上缺乏有效的、无损的实时监测手段。

常见的做法是使用看家蛋白(如GAPDH, β-actin)作为内参进行归一化。然而,这种方法存在固有缺陷:首先,它只能在最后显影阶段才能评估上样误差,此时样本已消耗,若失败则需重头再来,成本高昂;其次,内参蛋白本身的表达也可能在某些实验条件下发生波动,并非绝对恒定。因此,在转膜前对凝胶上的总蛋白进行可视化,成为实现真正“全程质控"的关键。

2. WB预处理染色剂的选型:丽春红S的局限性与新需求

目前,用于WB预处理的染色剂主要是丽春红S(Ponceau S)。它是一种可逆的阴离子染料,能与蛋白质的碱性氨基酸残基结合,用水或缓冲液即可轻易洗脱,不影响后续的免疫检测。但其主要缺点在于灵敏度极低(检测下限约200-500 ng),对于低丰度蛋白或上样量少的微细条带常常无法显色,导致质控信息不完整。

科研界需要一种满足以下条件的理想预处理染色剂:

  1. 高灵敏度: 能清晰显示所有上样条带,包括低丰度蛋白。

  2. 可逆性: 染料必须能被、快速地洗脱,不留任何残留,以免干扰后续的一抗/二抗结合。

  3. 快速: 预处理步骤不应过多延长本就漫长的WB流程。

  4. 兼容性: 不改变膜的性质,不引起蛋白交联或修饰。

3. Eaivelly蛋白快速染色液作为WB预处理方案的可行性分析

Eaivelly蛋白快速染色液的出现,为WB预处理提供了超越丽春红S的优选方案。

3.1 灵敏度优势
Eaivelly的灵敏度(10-20 ng)远超丽春红S。在预处理阶段,它能够清晰地显示出凝胶上所有的蛋白条带,包括那些丽春红S无法检测的微弱条带。这使得研究者能够:

  • 精确评估上样均一性: 在电泳后即可直观确认每个泳道的总蛋白量是否一致,及时发现上样误差或样品制备问题,避免无效转膜和后续实验。

  • 验证转膜性: 转膜后,对凝胶进行二次染色(Post-transfer staining),若凝胶上再无蛋白条带,则证明转膜效率接近100%;若有残留,则可精准定位问题(如转膜时间不足、电流设置不当等)。

3.2 优异的可逆性与兼容性
这是Eaivelly能用于此场景的核心。其与蛋白的结合是非共价的,主要通过静电和疏水作用。研究表明,使用含有SDS和β-巯基乙醇的Western Blot洗涤缓冲液或脱色液(如含甲醇的酸性溶液)进行短暂孵育,可以高效地将结合在膜上蛋白的染料分子洗脱,且洗脱后的膜进行常规的封闭、抗体孵育和化学发光检测,与未经过染色的膜相比,在背景信号、目标条带强度方面无显著差异。其洗脱性保证了零背景干扰,为高信噪比的免疫检测奠定了基础。

3.3 流程整合与时间效率
整个预处理流程可在30分钟内完成:染色10-15分钟,短暂漂洗(去除背景),成像记录,然后进行可逆洗脱(10-15分钟),之后即可进入封闭步骤。这与使用丽春红S(染色5分钟,水洗,成像,再水洗脱色)的时间相当,但获得了远超后者的质控信息深度。

4. 实验方案与数据解读

推荐流程:

  1. (可选)凝胶染色质控: 电泳后,将凝胶浸于Eaivelly工作液中,室温摇动染色15-20分钟。

  2. 短暂漂洗: 用去离子水短暂漂洗凝胶(5-10分钟),降低背景。

  3. 成像: 使用普通白光扫描仪或成像系统采集凝胶图像,用于上样量分析。

  4. 转膜: 按常规流程进行转膜。

  5. 转膜后凝胶染色(验证转膜效率): 将转膜后的凝胶再次放入Eaivelly染液中染色15分钟,漂洗后成像。干净的凝胶背景表明转膜。

  6. 膜上染色与可逆: 将转印后的膜浸入Eaivelly工作液中,摇动染色5-10分钟。

  7. 用去离子水短暂漂洗膜,直至背景清晰。

  8. 成像记录: 获得膜的总蛋白分布图。

  9. 洗脱: 将膜浸入含0.1% SDS、25mM NaOH的洗脱液中,或标准的WB洗涤缓冲液(TBST)中,摇动孵育10-15分钟,直至染料褪去。用TBST简单冲洗后,即可进行封闭及后续步骤。

数据解读: 获得的凝胶和膜图像可用于软件分析(如ImageJ, ImageLab等),对每个泳道进行总蛋白信号积分,从而实现真正意义上的“总蛋白归一化"(Total Protein Normalization, TPN),这种方法被认为比单一内参归一化更稳定、更可靠。

5. 结论与意义

将Eaivelly蛋白快速染色液创新性地应用于Western Blot的预处理质控环节,是实验流程优化的一次重要升级。它打破了传统WB的“黑箱"操作,将质控节点前置化和可视化,赋予了研究者对整个流程更强的掌控力。通过实现高灵敏度的上样量可视化和转膜效率验证,它能有效减少因前期步骤失误导致的实验失败,节约珍贵的样本和时间成本,最终大幅提升Western Blot数据的可靠性和重复性。

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