1. 技术背景与试剂盒组成
检测原理:基于荧光染料特异性结合双链DNA(dsDNA)的特性,通过PicoGreen染料与dsDNA结合后荧光信号增强数千倍,实现高灵敏度定量。
试剂盒组成:
DSDNA HS Assay Reagent(试剂A):200×浓缩液(1.25 mL),含PicoGreen染料;
DSDNA HS Assay Buffer(缓冲B):250 mL,用于稀释样品与试剂;
标准品1(C组份):0 ng/μL dsDNA(TE缓冲液);
标准品2(D组份):10 ng/μL dsDNA(TE缓冲液)。
兼容性:适用于Qubit 2.0/3.0/4.0荧光计及荧光酶标仪,支持单次检测1-20 μL样品。
2. 性能指标与优势
灵敏度:可检测低至0.2 ng/μL(200 pg/mL)的dsDNA,线性范围10 pg/μL至100 ng/μL;
特异性:对dsDNA的选择性>99%,不受ssDNA、RNA、蛋白质或盐离子干扰;
准确性:与qPCR结果相关性R²>0.99,CV值<5%(50次重复实验);
抗污染性:耐受1% SDS、500 mM NaCl、1 mg/mL BSA等常见污染物。
1. NGS文库定量与质控
实验设计:
提取DNA后,使用Qubit dsDNA HS Assay Kit定量文库浓度;
稀释文库至推荐浓度(如Illumina平台需2-10 nM),结合Qubit结果与Agilent 2100生物分析仪检测片段分布。
结果示例:
定量某NGS文库,Qubit检测浓度为4.5 ng/μL(约2.8 nM),Agilent 2100显示主峰位于350 bp,符合预期;
对比紫外分光光度计(Nanodrop)结果,Qubit浓度低15%,因Nanodrop高估了RNA与蛋白质污染。
2. 临床样本DNA定量
实验设计:
提取患者外周血或组织DNA,使用Qubit检测浓度;
结合qPCR验证基因拷贝数变异(如肿瘤突变负荷检测)。
结果示例:
定量乳腺癌患者cfDNA,Qubit检测浓度为8.2 ng/μL,qPCR显示TP53突变频率为12%,与病理诊断一致;
对比紫外法,Qubit浓度误差率<8%,而Nanodrop误差率达25%。
3. 微生物DNA定量
实验设计:
提取细菌/病毒DNA,使用Qubit检测浓度;
结合qPCR或数字PCR分析病原载量(如病毒载量检测)。
结果示例:
定量新冠病毒RNA提取产物,Qubit检测浓度为3.1 ng/μL(约1.9×10⁶ copies/μL),qPCR结果与之高度相关(R²=0.98);
对比紫外法,Qubit检测下限低10倍,适合低载量样本。
1. 实验前准备
试剂配制:
将试剂A与缓冲B按1:200稀释(如10 μL试剂A + 2 mL缓冲B),制备工作液;
标准品1与标准品2无需稀释,直接使用。
仪器校准:
使用Qubit仪器时,选择“dsDNA HS Assay"程序,预热10分钟;
使用酶标仪时,设置激发波长480 nm,发射波长520 nm。
2. 检测流程
标准曲线建立:
取200 μL工作液分别加入2支Qubit管,加入10 μL标准品1与标准品2;
混匀后避光孵育2分钟,插入Qubit仪器检测,生成标准曲线。
样品检测:
取200 μL工作液加入Qubit管,加入1-20 μL样品(建议体积1 μL);
混匀后孵育2分钟,检测并记录浓度。
3. 实验后处理
废弃物处理:
含染料的废弃液按生物危害品处理,避免直接排放;
未使用的标准品与工作液可4℃保存1周,但建议现用现配。
仪器维护:
Qubit管使用后立即丢弃,避免重复使用;
酶标仪定期清洁光路,避免染料残留。
Q1:Qubit检测结果与qPCR差异较大?
A:
检查qPCR引物特异性,避免非特异性扩增;
确认Qubit检测范围(10 pg/μL-100 ng/μL),超范围样本需稀释;
对比qPCR标准曲线,确认扩增效率(90%-110%)。
Q2:样品中含RNA或蛋白质如何处理?
A:
Qubit染料对dsDNA特异性>99%,无需额外纯化;
若需同时检测RNA,可使用Qubit RNA BR Assay Kit(货号Q32852)。
Q3:如何延长试剂盒有效期?
A:
试剂A避光保存于-20℃,避免反复冻融;
缓冲B与标准品4℃保存,避免高温或光照;
开封后试剂盒6个月内使用完毕。